Occurrence

Base de datos sobre los hongos anamorfos de restos de vegetales del bosque mesófilo del estado de Veracruz

Dernière version Publié par Comisión nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad le 11 avril 2024 Comisión nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad
Accueil:
Lien
Date de publication:
11 avril 2024
Licence:
CC-BY 4.0

Téléchargez la dernière version de la ressource en tant qu'Archive Darwin Core (DwC-A), ou les métadonnées de la ressource au format EML ou RTF :

Données sous forme de fichier DwC-A (zip) télécharger 506 enregistrements dans Espagnol (89 KB) - Fréquence de mise à jour: non planifié
Métadonnées sous forme de fichier EML télécharger dans Espagnol (179 KB)
Métadonnées sous forme de fichier RTF télécharger dans Espagnol (51 KB)

Description

A pesar de su importancia ecológica, extensa diversidad y potencial biotecnológico, los hongos microscópicos saprobios han sido pobremente estudiados en nuestro país. A nivel mundial la mayoría de los programas y textos sobre la biodiversidad en el territorio nacional no consideran las poblaciones microscópicas. Las especies anamorfas (hongos a los que no se les ha encontrado fase sexual) son las mejor representadas entre los hongos microscópicos, constituyen un grupo altamente diverso que prolifera tanto en ambientes naturales como domésticos. En la naturaleza, los restos vegetales son sustratos idóneos para su desarrollo, prueba de esto es el alto número de taxones nuevos descritos en los últimos años. En particular los bosques mesófilos de montaña (BMM), por su clima y alta producción y acumulación de hojarasca, son ecosistemas que favorecen el desarrollo de los hongos anamorfos. Ante la constante reducción de las escazas áreas de bosque mesófilo que aun quedan en el país es urgente incrementar exploraciones biológicas encaminadas al conocimiento del germoplasma que en dicho bioma prospera. En el estado de Veracruz, en los últimos 20 años la superficie con BMM ha disminuido dramáticamente, las pocas áreas conservadas han quedado confinadas a pequeños manchones, generalmente en cañadas y sitios poco accesibles. Esta propuesta tiene como objetivo incrementar el conocimiento sobre la diversidad de los anamorfos del BMM del estado de Veracruz, para lo cual se realizarán colectas en diversas zonas, abarcando áreas boscosas del norte, centro y sur de la entidad. Paralelamente como objetivos particulares se exponen los siguientes: a) incrementar las colecciones de laminillas microscópicas para el herbario de Hongos del INECOL (XAL). b) incrementar el acervo del banco de imágenes de microfotografías, c) continuar con la capacitación de recursos humanos y d) publicar nuevos registros y nuevas especies en revista especializadas.

Reino: 1 Filo: 2 Clase: 6 Orden: 13 Familia: 26 Género: 129 Especie: 242 Epitetoinfraespecifico: 2

Enregistrements de données

Les données de cette ressource occurrence ont été publiées sous forme d'une Archive Darwin Core (Darwin Core Archive ou DwC-A), le format standard pour partager des données de biodiversité en tant qu'ensemble d'un ou plusieurs tableurs de données. Le tableur de données du cœur de standard (core) contient 506 enregistrements.

Cet IPT archive les données et sert donc de dépôt de données. Les données et métadonnées de la ressource sont disponibles pour téléchargement dans la section téléchargements. Le tableau des versions liste les autres versions de chaque ressource rendues disponibles de façon publique et permet de tracer les modifications apportées à la ressource au fil du temps.

Versions

Le tableau ci-dessous n'affiche que les versions publiées de la ressource accessibles publiquement.

Comment citer

Les chercheurs doivent citer cette ressource comme suit:

'Arias-Mota R. M. 2012. Base de datos sobre los hongos anamorfos de restos de vegetales del bosque mesófilo del estado de Veracruz. Instituto de Ecología. Bases de datos SNIB-CONABIO, proyecto IE004. México, D. F.'

Droits

Les chercheurs doivent respecter la déclaration de droits suivante:

L’éditeur et détenteur des droits de cette ressource est Comisión nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad. Ce travail est sous licence Creative Commons Attribution (CC-BY) 4.0.

Enregistrement GBIF

Cette ressource a été enregistrée sur le portail GBIF, et possède l'UUID GBIF suivante : 5dd971a0-a9f6-4ee0-b07f-9ad51e8f41c1.  Comisión nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad publie cette ressource, et est enregistré dans le GBIF comme éditeur de données avec l'approbation du Biodiversity Information System of Mexico.

Mots-clé

Occurrence; Hongos; Occurrence

Données externes

Les données de la ressource sont disponibles dans d'autres formats

SNIB-IE004-CSV.zip http://www.snib.mx/proyectos/IE004/SNIB-IE004-CSV.zip UTF-8 CSV
SNIB-IE004-BD.zip http://www.snib.mx/proyectos/IE004/SNIB-IE004-BD.zip UTF-8 MDB MicrosoftAccess2007

Contacts

Gabriela Heredia Abarca
  • Créateur
Responsable
Instituto de Ecología ACDivisión de Ecología y Comportamiento AnimalDepartamento de Biología de Suelos
Apartado Postal 63
91000 Xalapa
Veracruz
MX
Tel 01(228) 842 1851 Fax 01(228) 818 7809
CONABIO Comisión nacional para el conocimiento y uso de la biodiversidad
  • Fournisseur Des Métadonnées
Dirección General de Sistemas
Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad
Liga Periférico-Insurgentes Sur No. 4903, Col. Parques del Pedregal
14010 MÉXICO
Tlalpan
MX
50045000
https://www.gob.mx/conabio
Patricia Ramos Rivera
  • Personne De Contact
Dirección General de Sistemas
Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad
Liga Periférico-Insurgentes Sur No. 4903, Col. Parques del Pedregal
14010 México
Tlalpan
MX
50045000
https://www.gob.mx/conabio

Couverture géographique

País: MEXICO (VERACRUZ DE IGNACIO DE LA LLAVE)

Enveloppe géographique Sud Ouest [18,344, -97,018], Nord Est [19,681, -94,888]

Couverture taxonomique

Reino: Fungi Filo: Ascomycota, Basidiomycota Clase: Incertae sedis, Dothideomycetes, Sordariomycetes, Atractiellomycetes, Leotiomycetes, Eurotiomycetes Orden: Incertae sedis, Pleosporales, Sordariales, Hypocreales, Capnodiales, Atractiellales, Hysteriales, Chaetosphaeriales, Helotiales, Microascales, Xylariales, Chaetothyriales, Trichosphaeriales Familia: Incertae sedis, Tubeufiaceae, Nectriaceae, Melanommataceae, Mycosphaerellaceae, Chaetomiaceae, Massarinaceae, Hysteriaceae, Helminthosphaeriaceae, Chaetosphaeriaceae, Helotiaceae, Ceratocystidaceae, Teratosphaeriaceae, Asterinaceae, Hyponectriaceae, Amicodiscaceae, Dematiaceae, Herpotrichiellaceae, Venturiaceae, Sporormiaceae, Halosphaeriaceae, Trichosphaeriaceae, Vibrisseaceae, Pleosporaceae, Corynesporascaceae, Lasiosphaeriaceae

Kingdom Fungi
Phylum Ascomycota, Basidiomycota
Class Incertae sedis, Dothideomycetes, Sordariomycetes, Atractiellomycetes, Leotiomycetes, Eurotiomycetes
Order Incertae sedis, Pleosporales, Sordariales, Hypocreales, Capnodiales, Atractiellales, Hysteriales, Chaetosphaeriales, Helotiales, Microascales, Xylariales, Chaetothyriales, Trichosphaeriales
Family Incertae sedis, Tubeufiaceae, Nectriaceae, Melanommataceae, Mycosphaerellaceae, Chaetomiaceae, Massarinaceae, Hysteriaceae, Helminthosphaeriaceae, Chaetosphaeriaceae, Helotiaceae, Ceratocystidaceae, Teratosphaeriaceae, Asterinaceae, Hyponectriaceae, Amicodiscaceae, Dematiaceae, Herpotrichiellaceae, Venturiaceae, Sporormiaceae, Halosphaeriaceae, Trichosphaeriaceae, Vibrisseaceae, Pleosporaceae, Corynesporascaceae, Lasiosphaeriaceae
Genus Gangliostilbe, Helicomyces, Kionochaeta, Pleurothecium, Chaetopsina, Manoharachariella, Harpographium, Monodictys, Sporidesmiella, Eriocercospora, Bactrodesmium, Ceratosporella, Hobsonia, Trichocladium, Helminthosporium, Acrogenospora, Ityorhoptrum, Spadicoides, Wiesneriomyces, Lauriomyces, Zanclospora, Cryptocoryneum, Chalara, Condylospora, Endophragmiella, Exserticlava, Repetophragma, Selenodriella, Cryptophiale, Pseudobeltrania, Dictyochaetopsis, Zygosporium, Sporoschisma, Dictyosporium, Helicosporium, Fusichalara, Ernakulamia, Melanocephala, Cordana, Piricauda, Idriella, Beltrania, Ellisembia, Cacumisporium, Sporendocladia, Candelabrum, Brachysporiella, Phaeoisaria, Dictyochaeta, Menisporopsis, Subulispora, Guedea, Scolecobasidium, Bactrodesmiastrum, Minimelanolocus, Campylospora, Junewangia, Penidiella, Triposporium, Helicoma, Pseudospiropes, Dactylaria, Vermiculariopsiella, Synnemacrodictys, Polyschema, Trichothecium, Trichoconis, Beltraniella, Haplographium, Speiropsis, Isthmolongispora, Mirandina, Tretospeira, Phragmocephala, Digitodesmium, Stanjehughesia, Exosporium, Arachnophora, Calongia, Periconia, Hermatomyces, Circinotrichum, Gyrothrix, Anaseptoidium, Listeromyces, Ardhachandra, Cylindrosympodium, Chloridium, Paliphora, Acrodictys, Cylindrocladium, Sporidesmium, Craspedodidymum, Dendryphiopsis, Dischloridium, Pappimyces, Berkleasmium, Cirrenalia, Beltraniopsis, Spermosporella, Parasympodiella, Anungitea, Brachysporium, Melanographium, Selenosporella, Phaeomonilia, Rhinotrichella, Solicorynespora, Phialocephala, Brachydesmiella, Thozetella, Pithomyces, Stachybotrys, Dendryphiella, Kramasamuha, Tetraploa, Teratosperma, Corynespora, Anungitopsis, Roigiella, Sporoschismopsis, Piricaudilium, Helicoön, Pseudocanalisporium, Septomyrothecium, Angulimaya, Canalisporium, Gonytrichum, Eversia
Species Gangliostilbe costaricensis, Helicomyces torquatus, Kionochaeta ramifera, Pleurothecium recurvatum, Chaetopsina catenulata, Manoharachariella lignicola, Harpographium congestum, Monodictys cerebriformis, Eriocercospora balladynae, Bactrodesmium novae-geronense, Ceratosporella deviata, Hobsonia mirabilis, Trichocladium macrosporum, Helminthosporium solani, Acrogenospora sphaerocephala, Ityorhoptrum verruculosum, Monodictys putredinis, Spadicoides obovata, Wiesneriomyces laurinus, Chaetopsina penicillata, Lauriomyces bellulus, Zanclospora novae-zelandiae, Cryptocoryneum rilstonei, Chalara urceolata, Condylospora flexuosa, Endophragmiella boewei, Exserticlava vasiformis, Repetophragma paracambrense, Selenodriella intermedia, Monodictys lepraria, Monodictys shigatsensis, Chalara alabamensis, Cryptophiale kakombensis, Pseudobeltrania angamosensis, Dictyochaetopsis menisporoides, Zygosporium echinosporum, Sporoschisma saccardoi, Dictyosporium heptasporum, Monodictys nigriglobulosa, Helicosporium griseum, Fusichalara dimorphospora, Ernakulamia cochinensis, Melanocephala australiensis, Cordana uniseptata, Piricauda longispora, Lauriomyces sakaeratensis, Idriella angamosensis, Beltrania malaiensis, Ellisembia adscendens, Monodictys sessilis, Dictyosporium prolificum, Cacumisporium curvularioides, Sporendocladia bactrospora, Chaetopsina nimbae, Candelabrum microsporum, Candelabrum brocchiatum, Brachysporiella pulchra, Zanclospora brevispora, Phaeoisaria clematidis, Dictyochaeta novae-guineensis, Dictyochaetopsis polysetosa, Menisporopsis anisospora, Subulispora procurvata, Dictyosporium bulbosum, Melanocephala triseptata, Guedea novae-zelandiae, Cryptophiale udagawae, Monodictys nitens, Scolecobasidium constrictum, Bactrodesmiastrum obscurum, Cordana ellipsoidea, Minimelanolocus rousselianus, Campylospora filicladia, Dictyochaeta microcylindrospora, Junewangia globulosa, Penidiella cubensis, Bactrodesmium longisporum, Triposporium elegans, Helicoma ambiens, Chaetopsina fulva, Pseudospiropes josserandii, Helicosporium guianense, Dactylaria candidula, Dictyochaeta pluriguttulata, Vermiculariopsiella immersa, Synnemacrodictys stilboidea, Polyschema cubense, Trichothecium microvermisporum, Trichoconis caudata, Helicosporium phragmitis, Beltraniella portoricensis, Haplographium delicatum, Menisporopsis novae-zelandiae, Speiropsis scopiformis, Isthmolongispora variabilis, Mirandina corticola, Tretospeira ugandensis, Phragmocephala glanduliformis, Piricauda mexicana, Menisporopsis theobromae, Spadicoides subsphaerica, Zygosporium masonii, Phragmocephala elliptica, Digitodesmium elegans, Stanjehughesia nigroascus, Exosporium ampullaceum, Arachnophora polyradiata, Calongia gibelluloides, Periconia cookei, Monodictys melanopa, Hermatomyces amphisporus, Circinotrichum maculiforme, Beltrania rhombica, Chalara hughesii, Gyrothrix citricola, Phaeoisaria atra, Pseudobeltrania havanensis, Anaseptoidium mycophilum, Listeromyces insignis, Ardhachandra selenoides, Candelabrum clathrosphaeroides, Circinotrichum papakurae, Cylindrosympodium sosae, Chloridium virescens, Paliphora aurea, Phaeoisaria infrafertilis, Gyrothrix circinata, Acrodictys septosporioides, Cylindrocladium ilicicola, Chloridium lignicola, Kionochaeta spissa, Sporidesmium vagum, Craspedodidymum proliferans, Helicosporium aureum, Dendryphiopsis atra, Repetophragma inflatum, Phaeoisaria clavulata, Mirandina flagelliformis, Helicoma perelegans, Paliphora intermedia, Idriella lunata, Dischloridium laeense, Pappimyces hastatus, Beltraniella clara, Berkleasmium sinense, Sporidesmium australiense, Fusichalara minuta, Pseudobeltrania macrospora, Cirrenalia pseudomacrocephala, Hermatomyces tucumanensis, Gyrothrix microsperma, Sporidesmium cookei, Beltraniopsis tanzaniensis, Helicosporium nizamabadense, Beltrania concurvispora, Dictyosporium giganticum, Helicomyces colligatus, Circinotrichum olivaceum, Spermosporella flagelliformis, Gyrothrix podosperma, Parasympodiella laxa, Anungitea longicatena, Brachysporium obovatum, Melanographium selenioides, Beltrania onirica, Selenosporella conglutinata, Phaeomonilia corticola, Rhinotrichella elegans, Dictyosporium tetrasporum, Zygosporium pacificum, Solicorynespora pseudolmediae, Phialocephala humicola, Trichocladium asperum, Sporidesmium nanii, Thozetella havanensis, Pithomyces sumiderensis, Stachybotrys parvispora, Dictyochaeta assamica, Bactrodesmium biformatum, Dictyochaetopsis brasiliensis, Dendryphiella vinosa, Stachybotrys kampalensis, Sporidesmium tropicale, Kramasamuha sibika, Endophragmiella variabilis, Tetraploa aristata, Zygosporium oscheoides, Sporidesmium tengii, Teratosperma sclerotivorum, Helicosporium talbotii, Corynespora elaeidicola, Monodictys abuensis, Teratosperma singulare, Anungitopsis triseptata, Dictyosporium toruloides, Subulispora longirostrata, Roigiella lignicola, Acrodictys bambusicola, Sporoschismopsis moravica, Sporoschisma nigroseptatum, Gyrothrix verticiclada, Menisporopsis profusa, Beltraniopsis ramosa, Dictyosporium campaniforme, Chaetopsina splendida, Dictyochaeta simplex, Thozetella cubensis, Periconia byssoides, Mirandina fragilis, Dictyosporium subramanianii, Anungitea uniseptata, Helicosporium panachaeum, Monodictys peruviana, Chalara affinis, Dictyochaeta fertilis, Endophragmiella uniseptata, Monodictys capensis, Idriella taiwanensis, Dictyochaeta cylindrospora, Chalara brevipes, Gyrothrix grisea, Ellisembia calyptrata, Minimelanolocus olivaceus, Piricaudilium lobatum, Berkleasmium pandani, Chalara aurea, Dictyochaeta stipitocolla, Chaetopsina acutispora, Helicoön doliiformis, Pseudocanalisporium circumfecundum, Zygosporium gibbum, Stachybotrys dichroa, Septomyrothecium uniseptatum, Angulimaya sundara, Canalisporium pulchrum, Gonytrichum chlamydosporium, Sporidesmiella parva, Eversia parvula, Endophragmiella angustispora, Cylindrosympodium robustum, Gonytrichum macrocladum, Endophragmiella novae-zelandiae
Infraspecificname Sporidesmiella hyalosperma var. hyalosperma, Brachydesmiella biseptata var. biseptata

Couverture temporelle

Date de début / Date de fin 2010-02-07 / 2011-09-18

Données sur le projet

A pesar de su importancia ecológica, extensa diversidad y potencial biotecnológico, los hongos microscópicos saprobios han sido pobremente estudiados en nuestro país. A nivel mundial la mayoría de los programas y textos sobre la biodiversidad en el territorio nacional no consideran las poblaciones microscópicas. Las especies anamorfas (hongos a los que no se les ha encontrado fase sexual) son las mejor representadas entre los hongos microscópicos, constituyen un grupo altamente diverso que prolifera tanto en ambientes naturales como domésticos. En la naturaleza, los restos vegetales son sustratos idóneos para su desarrollo, prueba de esto es el alto número de taxones nuevos descritos en los últimos años. En particular los bosques mesófilos de montaña (BMM), por su clima y alta producción y acumulación de hojarasca, son ecosistemas que favorecen el desarrollo de los hongos anamorfos. Ante la constante reducción de las escazas áreas de bosque mesófilo que aun quedan en el país es urgente incrementar exploraciones biológicas encaminadas al conocimiento del germoplasma que en dicho bioma prospera. En el estado de Veracruz, en los últimos 20 años la superficie con BMM ha disminuido dramáticamente, las pocas áreas conservadas han quedado confinadas a pequeños manchones, generalmente en cañadas y sitios poco accesibles. Esta propuesta tiene como objetivo incrementar el conocimiento sobre la diversidad de los anamorfos del BMM del estado de Veracruz, para lo cual se realizarán colectas en diversas zonas, abarcando áreas boscosas del norte, centro y sur de la entidad. Paralelamente como objetivos particulares se exponen los siguientes: a) incrementar las colecciones de laminillas microscópicas para el herbario de Hongos del INECOL (XAL). b) incrementar el acervo del banco de imágenes de microfotografías, c) continuar con la capacitación de recursos humanos y d) publicar nuevos registros y nuevas especies en revista especializadas.

Titre Base de datos sobre los hongos anamorfos de restos de vegetales del bosque mesófilo del estado de Veracruz
Identifiant SNIB-IE004-IE0041207F_Corregida-ND
Financement Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad (CONABIO)
Description du domaine d'étude / de recherche Hongos agallas, royas, tizones de copa falsas setas líquenes mohos NO DISPONIBLE

Les personnes impliquées dans le projet:

Gabriela Heredia Abarca
  • Content Provider

Données de collection

Nom de la collection Colección de Hongos;XAL;Instituto de Ecología, A. C., Xalapa;INECOL
Identifiant de collection SNIB-IE004-IE0041207F_Corregida-ND
Identifiant de la collection parente NO APLICA
Méthode de conservation des spécimens Other
Unités de conservation Entre (nombre minimal) 1 et (nombre maximal) 1 Ejemplar

Citations bibliographiques

  1. Subramanian, C. V. & Lodha, B. C. 1964. Four new coprophilous Hyphomycetes. Antonie van Leeuwenhoek. 30: 317-330.
  2. Matsushima, T. 1975. Icones Microfungorum a Matsushima Lectorum. Kobe, Japan. 415 pp.
  3. Castañeda-Ruíz, R. F., Gams, W. & Saikawa, M. 1997. Three new conidial fungi (Hyphomycetes) from Cuba. Nova Hedwigia. 64(3-4): 473-483.
  4. Ellis, M. B. 1976. More Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwealth Mycological Institute, Kwe, Surrey, England. 507 pp.
  5. Pirozynski, K. A. 1963. Beltrania and related genera. Mycol. Pap. 90: 1-37.
  6. Ellis, M. B. 1971. Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwealth Mycological Institute, Kew, Surrey, England. 608 pp.
  7. Matsushima, T. 1971. Microfungi of the Solomon Islands and Papua-New Guinea. Kobe, Japan. 78 pp.
  8. Taylor, J. E. & Hyde, K. D. 2003. Microfungi of tropical and temperate palms. Fungal Diversity Research Series, Hong Kong, 459 pp.
  9. Subramanian, C. V. 1958. Hyphomycetes VI. J. Indian Bot. Soc. 37(3): 401-407.
  10. Hawksworth, D. L. & Etayo, J. 2010. Calongia gibelluloides gen. sp. nov., a remarkable minute new lichenicolous conidial fungus from northern Spain. The Lichenologist. 42(4): 355-359.
  11. Tubaki, K. 1975. Notes on the Japanese hyphomycetes IV. Candelabrum and Beverwykella gen. nov. Transc. Mycol. Soc. Japan. 16(2): 132-140.
  12. Subramanian, C. V. 1957. Hyphomycetes-IV. Section B. Proc. Indian Acad. Sci., Pl. Sci., B. 46: 324-335.
  13. Castañeda-Ruíz, R. F. & Arnold, G. R. W. 1985. Deuteromycotina de Cuba I. Revista Jard. Bot. Nac. Univ. Habana. 6(1): 47-67.
  14. Nag Raj, T. R. & Kendrick, W. B. 1976. A monograph of Chalara and allied genera. University of Waterloo, Ontario. 200 pp.
  15. Pirozynski, K. A. 1962. Circinotrichum and Gyrothrix. Mycol. Pap. 84: 1-28.
  16. Ellis, M. B. 1972. Dematiaceous Hyphomycetes. XI. Mycol. Pap. 131: 1-25.
  17. Castañeda-Ruíz, R. F. & Kendrick, W. B. 1991. Ninety-nine conidial fungi from Cuba and three from Canada. Univ. Waterloo Biol. Ser. 35: 131.
  18. de Hoog, G. S. 1985. Taxonomy of the Dactylaria complex, IV. Dactylaria, Neta, Subulispora and Scolecobasidium. Stud. Mycol. 26: 1-60.
  19. Arambarri, A., Cabello, M. & Mengascini, A. 1987. Estudio sistemático de los Hyphomycetes del Rio Santiago (Prov. Buenos Aires, Argentina). Darwiniana. 28: 293-301.
  20. Romero, A. I. 1983. Contribución al estudio de los hongos xilofilos de la Argentina. I. Deuteromycotina en Eucalyptus viminalis (Myrtaceae). Bol. Soc. Argent. Bot. 22: 57-79.
  21. Tsui, K. M., Berbee, M. L., Jeewon, R. & Hyde, K. D. 2006. Molecular phylogeny of Dictyosporium and allied genera inferred from ribosomal DNA. Fungal Diversity. 21: 157-166.
  22. Kirk, P. M. 1981. New or interesting microfungi II. Dematiaceous Hyphomycetes from Ester Common, Surrey. Trans. Brit. Mycol. Soc. 77(2): 279-297.
  23. Sutton, B. C. 1976. Species of Hemibeltrania Piroz. and Dischloridium gen. nov. Kavaka. 4: 43-50.
  24. Hughes, S. J. 1978. Endophragmiella angustispora. Fungi Canadenses. 123: 1-2.
  25. Hughes, S. J. 1979. Relocation of species of Endophragmia auct. whit notes on relevant generic names. New Zealand J. Bot. 17: 139-188.
  26. Castañeda-Ruíz, R. F. 1988. Fungi Cubenses III. Rev. Jard. Bot. Nac., Univ. Habana. 22 pp.Humboldt". Cuba.
  27. Deighton, F. C. 1969. Microfungi IV: Some hyperparasitic hyphomycetes and a note on Cercosporella uredinophila Sacc. Mycol. Pap. 118(26): 1-41.
  28. Linder, D. H. 1929. A monograph of the Helicosporous Fungi Imperfecti. Ann. Missouri Bot. Gard. 16(3): 227-308.
  29. Berkeley, M. J. 1874. Notices of North American Fungi. Grevillea. 3(26): 49-64.
  30. Ellis, M. B. 1961. Dematiaceous Hyphomycetes. III. Mycol. Pap. 82(27): 1-55.
  31. Matsushima, T. 1980. Saprophytic microfungi from Taiwan. Part. 1. Hyphomycetes. Matsushima Mycological Memoirs 1. Taiwan. 82 pp.
  32. Baker, W. A., Partridge, E. C. & Morgan-Jones, G. 2002. Notes on Hyphomycetes. LXXXV. Junewangia, a genus in which to classify four Acrodictys species and a new taxon. Mycotaxon. 81: 293-319.
  33. Subramanian, C. V. & Sudha, K. 1978. Ardhachandra, a new genus of the Hyphomycetes. Canad. J. Bot. 56(7): 729-731.
  34. Gams, W. & Holubová-Jechová, V. 1976. Chloridium and some other Dematiaceous Hyphomycetes growing on decaying wood. Stud. Mycol. 13: 1-99.
  35. Pirozynski, K. A. 1968. Cryptophiale, a new genus of Hyphomycetes. Canad. J. Bot. 46(9): 1123-1127.
  36. Deighton, F. C. 1974. Four synnematous hyphomycetes. Trans. Brit. Mycol. Soc. 62(2): 243-252.
  37. Kirk, P. M. & Sutton, B. C. 1985. A reassessment of the anamorph genus Chaetopsina (Hyphomycetes). Trans. Brit. Mycol. Soc. 85(4): 709-717.
  38. Hughes, S. J. 1958. Revisiones Hyphomycetum aliquot cum appendice de nominibus rejiciendis. Canad. J. Bot. 36(6): 727-836.
  39. Sutton, B. C. & Hodges, C. S. 1976. Eucalyptus microfungi: Microdochium and Phaeoisaria species from Brazil. Nova Hedwigia. 27: 215: 222.
  40. Matsushima, T. 1995. Matsushima Mycological Memoirs 8. Taiwan. 54 pp.
  41. Matsushima, T. 1983. Matsushima Mycological Memoirs 3. Taiwan. 90 pp.
  42. Onofri, S. 1983. A new Beltraniella species from tropical forest litter. Mycotaxon. 17: 242-246.
  43. Pirozynski, K. A. 1972. Microfungi of Tanzania. I. Miscellaneous fungi on oil Palm. II. New Hyphomycetes. Mycol. Pap. 129: 1-64.
  44. Samuels, G. J. 1985. Four new species of Nectria and their Chaetopsina anamorphs. Mycotaxon. 22(1): 13-32.
  45. Merli, S., Garofano, L., Rambelli, A. & Pasqualetti, M. 1992. Chaetopsina nimbae, a new species of dematiaceous Hyphomycetes. Mycotaxon. 44(2): 323-331.
  46. Hughes, S. J. & Pirozynski, K. A. 1971. New Zealand Fungi 15. Beltraniella, Circinotrichum and Gyrothrix (syn. Peglionia). New Zealand J. Bot. 9: 39-45.
  47. Holubová-Jechová, V. 1984. Lignicolous Hyphomycetes from Czechoslovakia 7. Chalara, Exochalara, Fusichalara and Dictyochaeta. Folia Geobot. Phytotax. 19(4): 387-438.
  48. Damon, S. C. 1952. Lloydia. 15: 110-124. Type studies in Dictyosporium, Speira and Cattanea.
  49. Mercado, A., Gené, J. & Guarro, J. 1997. Some Costa Rican hyphomycetes. II. Mycotaxon. 64: 7-16.
  50. Barron, G. L. & Bhatt, G. C. 1967. A new species of Gonytrichum from soil. Mycopathol. Mycol. Appl. 32(2): 126-128.
  51. Morgan, A. P. 1892. North-American Helicosporae. J. Cincinnati Soc. Nat. Hist. 15: 39-52.
  52. Moore, R. T. 1954. Three new species of Helicosporae. Mycologia. 46(1): 89-92.
  53. Lane, L. C. & Shearer, C. A. 1984. Helicomyces torquatus, a new hyphomycete from Panama. Mycotaxon. 19: 291-297.
  54. Chang, H. S. 2001. Helicoon doliiformis sp. nov. and two similar helicosporous hyphomycetes from Taiwan. Bot. Bull. Acad. Sin. 42: 149-152.
  55. Goos, R. D. 1989. On the anamorph genera Helicosporium and Drepanospora. Mycologia. 81(3): 356-374.
  56. Nelson, P. E. & Wihelm, S. 1956. An undescribed fungus causing a root rot of strawberry. Mycologia. 48(4): 547-551.
  57. Ellis, M. B. 1963. Dematiaceous Hyphomycetes. V. Mycol. Pap. 93: 1-33.
  58. Hughes, S. J. & Kendrick, W. B. 1968. New Zealand Fungi 12. Menispora, Codinaea, Menisporopsis. New Zealand J. Bot. 6: 323-375.
  59. Sinclair, R. C., Boshoff, S. & Eicker, A. 1996. A new species of Monodictys from South Africa. Mycotaxon. 59: 359-366.
  60. Holubová-Jechová, V. & Mercado, A. 1986. Studies on Hyphomycetes from Cuba IV. Dematiaceous Hyphomycetes from the Province Pinar del Rio. Ceská Mykol. 40(3): 142-164.
  61. Wu, Y. M., Geng, Y, H. & Zhang, T. Y. 2009. Three new species of Monodictys from soil. Mycotaxon. 109: 263-267.
  62. Tulloch, M. 1972. The genus Myrothecium. Mycol. Pap. 130: 1-42.
  63. Mercado, A., Heredia, G. & Mena, J. 1997. Tropical hyphomycetes of Mexico I. New species of Hemicorynespora, Piricauda and Rhinocladium. Mycotaxon. 63: 155-167.
  64. Mercado, A. & Mena, J. 1992. Nuevos o raros hifomicetes de Cuba VII. Especies enteroblásticas. Acta Bot. Hung. 37(1-4): 63-73.
  65. Holubová-Jechová, V. 1987. Studies on hyphomycetes from Cuba V. Six new species of dematiaceous hyphomycetes from Havana Province. Ceská Mykol. 41(1): 29-36.
  66. Heredia, G., Arias, R. M., Reyes, M. & Castañeda-Ruíz R. F. 2002. New anamorph fungi with rhombic conidia from Mexican tropical forest litter. Fungal Diversity. 11: 99-107.
  67. Castañeda-Ruíz, R. F. 1984. Nuevos taxones de Deuteromycotina: Arnoldiella robusta gen. et sp. nov.; Roigiella lignicola gen. et sp. nov.; Sporidesmium pseudolmediae sp. nov. y Thozetella havanensis sp. nov. Revista Jard. Bot. Nac. Univ. Habana. 5(1): 57-87.
  68. Wingfield, M. J., Van Wyk, P. S. & Wingfield, B. D. 1987. Reclassification of Phialocephala based on conidial development. Trans. Brit. Mycol. Soc. 89(4): 509-520.
  69. Hansford, C. G. 1943. Contribution towards the fungus flora of Uganda. V. Fungi Imperfecti. Proc. Linn. Soc. London. 155: 34-67.
  70. Maniotis, J. & Strain, J. W. 1968. Wiesneriomyces javanicus from Panamanian soil. Mycologia. 129: 1-64.
  71. Hughes, S. J. & Kendrick, W. B. 1965. New Zealand Fungi 4. Zanclospora gen. nov. New Zealand J. Bot. 3: 151-158.
  72. Hughes, S. J. 1951. Studies on micro-fungi. X. Zygosporium. Mycol. Pap. 44: 1-18.
  73. Kirk, P. M., Cannon, P. F., David, J. C. & Staplers, J. A. 2001. Dictionary of the Fungi. CAB International. 655 pp.
  74. Cai, L. McKenzie, E. H. C. & Hyde, K. D. 2004. New species of Cordana and Spadicoides from decaying bamboo culms in China. Sydowia. 56(2): 222-228.
  75. Subramanian, C. V. & Vittal, B. P. R. 1973. Three new Hyphomycetes from litter. Canad. J. Bot. 51(6): 1127-1132.
  76. Castañeda-Ruíz, R. F., Guarro, J., Velásquez-Noa, S. & Gené, J. 2003. A new species of Minimelanolocus and some hyphomycete records from rain forests in Brazil. Mycotaxon. 85: 231-239.
  77. Castañeda-Ruíz, R. F., Heredia, G., Reyes, M., Arias, R. M. & Decock, C. 2001. A revision of the genus Pseudospiropes and some new taxa. Cryptog. Mycol. 22(1): 1-18.
  78. Matsushima, T. 1987. Matsushima Mycological Memoirs 5. Taiwan. 34 pp.
  79. Sutton, B. C. & Hodges, C. S. Jr. 1975. Eucalyptus microfungi: two new hyphomycete genera from Brazil. Nova Hedwigia. 26: 527-533.
  80. Ponnappa, K. M. 1975. Parasympodiella gen. nov. Trans. Brit. Mycol. Soc. 64(2): 344-345.
  81. Crous, P. W., Braun, U. & Groenewald, J. Z. 2007. Mycosphaerella is polyphyletic. Stud. Mycol. 58: 1-32.
  82. Subramanian, C. V. 1992. A reassessment of Sporidesmium (Hyphomycetes) and some related taxa. Proc. Indian Acad. Sci. 58(4): 179-190.
  83. Mason, E. W. & Ellis, M. B. 1953. British species of Periconia. Mycol. Pap. 56: 1-127.
  84. Castañeda-Ruíz, R. F., Heredia, G., Arias, R. M., Saikawa, M., Minter, D. W. & Stadler, M. 2007. Anamorphic fungi from submerged plant material: Phaeomonilia pleiomorpha, P. corticola and Cacumisporium pleuroconidiophorum. Mycotaxon. 100: 327-336.
  85. Jong, S. C. & Davis, E. E. 1972. Phialocephala humicola, a new hyphomycete. Mycologia. 64(6): 1352-1356.
  86. Wu, W. P. & Zhuang, W. Y. 2005. Sporidesmium, Endophragmiella and related genera from China. Fungal Diversity Press, Hong Kong, 531 pp.
  87. Crous, P. W., Seifert, K. A. & Castañeda, R. F. 1996. Microfungi associated with Podocarpus leaf litter in South Africa. J. S. African Bot. 62: 89-98.
  88. Li, D. W. 2010. Spadicoides subsphaerica sp. nov. from Connecticut. Mycotaxon. 111: 257-261.
  89. Bisby, G. R. & Ellis, M. B. 1949. Stachybotrys dichroa Grove. Trans. Brit. Mycol. Soc. 32(2): 158-161.
  90. Nawawi, A. & Kuthubutheen, A. J. 1987. A new species of the genus Subulispora. Mycotaxon. 30: 459-463.
  91. Tubaki, K. & Yokoyama, T. 1971. Transc. Mycol. Soc. Japan. 12(1): 20. Notes on the Japanese Hyphomycetes. V
  92. Holubová-Jechová, V. 1988. Studies on Hyphomycetes from Cuba VIII. A new genus Piricaudilium and some species new for the territory of Cuba. Ceská Mykol. 42(4): 200-204.
  93. Deighton, F. C. & Pirozynsky, K. A. 1972. Microfungi V: More hyperparasitic hyphomycetes. Mycol. Pap. 128(17): 1-10.
  94. Castañeda-Ruíz, R. F. 1987. Fungi Cubenses II. Rev. Jard. Bot. Nac., Univ. Habana. 22 pp.
  95. Nag Raj, T. R. 1983. Vermiculariopsiella Bender, an earlier name for Oramasia urries. Mycotaxon. 18(1): 159-163.
  96. Kirk, P. M. 1982. New or interesting microfungi VI. Sporidesmiella gen. nov. (Hyphomycetes). Trans. Brit. Mycol. Soc. 79(3): 479-489.
  97. Castañeda-Ruíz, R. F., Iturriaga, T., Saikawa, M., Cano, J. & Guarro, J. 2001. The genus Menisporopsis in Venezuela with the addition of M. anisospora anam. sp. nov. from a palm tree. Cryptog. Mycol. 22(4): 259-263.
  98. Kirk, P. M. 1984. Volutellaria laurina Tassi, an earlier name for Wiesneriomyces javanicus Koorders. Trans. Brit. Mycol. Soc. 82(4): 748-749.
  99. Crous, P. W. & Wingfield, M. J. 1994. Sporendocladia fumosa and Lauriomyces bellulus sp. nov. from Castanea cupules in Switzerland. Sydowia. 46(2): 193-203.
  100. Pirozynski, K. A. & Hodges, C. S. Jr. 1973. New Hyphomycetes from South Carolina. Canad. J. Bot. 51(1): 151-173.
  101. Nawawi, A. & Kuthubutheen, A. J. 1989. Canalisporium, a new genus of lignicolous hyphomycetes from Malaysia. Mycotaxon. 34(2): 475-487.
  102. Nawawi, A. 1974. A new Campylospora. Trans. Brit. Mycol. Soc. 63(3): 603-607.
  103. Morgan-Jones, G. & Ingram, E. G. 1976. Notes on Hyphomycetes. XII. A new species of Chalara. Mycotaxon. 4(2): 489-492.
  104. Whitton, S. R., McKenzie, E. H. C. & Hyde, K. D. 2000. Dictyochaeta and Dictyochaetopsis species from the Pandanaceae. Fungal Diversity. 4: 133-158.
  105. Kuthubutheen, A. J. & Nawawi, A. 1991. Eight new species of Dictyochaeta (Hyphomycetes) from Malaysia. Mycol. Res. 95(10): 1211-1219.
  106. Arambarri, A. & Cabello, M. 1990. Considerations about Dictyochaeta, Codinaeopsis and a new genus: Dictyochaetopsis. Mycotaxon. 38: 11-14.
  107. Goh, T. K., Hyde, K. D., Ho, W. H., & Yanna. 1999. A revision of the genus Dictyosporium, with descriptions of three new species. Fungal Diversity. 2: 65-100.
  108. Zhao, G. Z. & Zhang, T. Y. 2007. Species of the genus Monodictys (Hyphomycetes) from China. Mycosystema. 26(3): 324-335.
  109. Alcorn, J. L. 1996. Paliphora intermedia sp. nov. from Australia. Mycotaxon. 59: 145-148.
  110. Goos, R. D. 1969. The genus Pleurothecium. Mycologia. 61(6):1048-1053
  111. Abbott, E. V. 1927. Scolecobasidium, a new genus of soil fungi. Mycologia. 19(1): 29-31
  112. Castañeda-Ruíz, R. F. & Kendrick, B. 1990. Conidial fungi from Cuba: II. Univ. Waterloo Biol. Ser. 33: 1-61.
  113. Hughes, S. J. 1952. Fungi from the Gold Coast. I. Mycol. Pap. 48(20): 1-91.
  114. Whitton, S. R., McKenzie, E. H. C. & Hyde, K. D. 2003. Microfungi on the Pandanaceae: Zygosporium, a review of the genus and two new species. Fungal Diversity. 12: 207-222.
  115. Holubová-Jechová, V. 1984. Bactrodesmiastrum, a new genus of Lignicolous Hyphomycetes. Folia Geobot. Phytotax. 19: 103-106.
  116. Calduch, M., Gené, J., Stchigel, A. M. & Guarro, J. 2002. New species of Dictyochaetopsis and Paraceratocladium from Brazil. Mycologia. 94(6): 1071-1077.
  117. Sutton, B. C. 1985. Notes on some deuteromycete genera with cheiroid or digitate brown conidia. Proc. Indian Acad. Sci., Pl. Sci. 94(2-3): 229-244.
  118. Cai, L. & Hyde, K. D. 2007. Anamorphic fungi from freshwater habitats in China: Dictyosporium tetrasporum and Exserticlava yunnanensis spp. nov., and two new records for Pseudofuscophialis lignicola and Pseudobotrytis terrestris. Mycoscience. 48(5): 290-296.
  119. Rao, P. R. & Rao, D. 1964. Some Helicosporae from Hyderabad-II. Mycopathol. Mycol. Appl. 24(1): 27-34.
  120. Somrithipol, S., Kosol, S. & Gareth Jones, E. B. 2006. Lauriomyces sakaeratensis sp. nov., a new hyphomycete on decaying Dipterocarpus costatus fruits from Sakaerat Biosphere Reserve, Thailand. Nova Hedwigia. 82(1-2): 209-215.
  121. Matsushima, T. 1993. Matsushima Mycological Memoirs 7. Taiwan. 290 pp.
  122. Holubová-Jechová, V. 1982. Lignicolous Hyphomycetes from Czechoslovakia. 6. Spadicoides and Diplococcium. Folia Geobot. Phytotax. 17: 295-327.
  123. Kuthubutheen, A. J. & Nawawi, A. 1987. A new species of Speiropsis from Malaysia. Trans. Brit. Mycol. Soc. 89(4): 584-587.
  124. McKenzie, E. H. C. 1995. Dematiaceous Hyphomycetes on Pandanaceae. 5. Sporidesmium sensu lato. Mycotaxon. 56: 9-29.
  125. Kirk, P. M. 1981. New or interesting microfungi I. Dematiaceous Hyphomycetes from Devon. Trans. Brit. Mycol. Soc. 76(1): 71-87.
  126. Hughes, S. J. 1989. New Zealand Fungi 33. Some new species and new records of dematiaceous hyphomycetes. New Zealand J. Bot. 27:449-459.
  127. McKenzie, E. H. C. 2008. Two new Dictyosporus hyphomycetes on Pandanaceae. Mycotaxon. 104: 23-28.
  128. Zucconi, L. & Rambelli, A. 1993. A new species of Chaetopsina from tropical litter. Mycotaxon. 48: 5-12.
  129. Sutton, B. C. & Hodges, C. S. 1976. Eucalyptus microfungi: some setose Hyphomycetes with phialides. Nova Hedwigia. 27: 343-352.
  130. Kohlmeyer, J. 1968. Marine fungi from the tropics. Mycologia. 60: 252-270.
  131. Rao, V. & de Hoog, G. S. 1986. New or critical Hyphomycetes from India. Stud. Mycol. 28: 1-84.
  132. Kuthubutheen, A. J. & Nawawi, A. 1991. Dictyochaeta guadalcanalensis comb. nov. and several new records of the genus en Malaysa. Mycol. Res. 95(10): 1220-1223.
  133. Castañeda-Ruíz, R. F., Gusmão, L. F. P., Guarro, J., Stchigel, A. M., Stadler, S. M., Saikawa, M. & Leao-Ferreira, S. M. 2008. Two new anamorphic fungi from Brazil: Dictyochaetopsis polysetosa and Myrothecium compactum. Mycotaxon. 103: 1-8.
  134. Hughes, S. J. 1978. New Zealand Fungi 25. Miscellaneous species. New Zealand J. Bot. 16: 311-370.
  135. Hughes, S. J. 1951. Stachylidium, Gonytrichum, Mesobotrys, Chaetopsis and Chaetopsella. Trans. Brit. Mycol. Soc. 34(4): 551-576.
  136. Zhao, G. Z. & Zhao, T. Y. 2004. Notes on dictyosporic Hyphomycetes from China V. The genus Monodictys. Mycosystema. 23(3): 324-327.
  137. Sivanesan, A. & Sutton, B. C. 1985. Microfungi on Xanthorrhoea. Trans. Brit. Mycol. Soc. 85(2): 239-255.
  138. Hughes, S. J. 1951. Studies on Micro-fungi. XII. Triposporium, Tripospermun, Ceratosporella, and Tetraposporium (gen. nov). Mycol. Pap. 46(12): 1-35.
  139. Mercado, A. & Mena, J. 1986. Hifomicetes de Topes de Collantes, Cuba I (Especies holoblásticas). Acta Bot. Hung. 32(1-4): 189-205.
  140. Castañeda-Ruíz, R. F. 1985. Deuteromycotina de Cuba. Hyphomycetes II. Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical "Alejandro de Humboldt" de la Academia de Ciencias de Cuba, Cuba, 23 pp.
  141. Onofri, S., Lunghini, D., Rambelli, A. & Lustrati, L. 1981. New dematiaceous hyphomycetes from tropical rain forest litter. Mycotaxon. 13(2):331-338.
  142. Voglmayr, H. 1998. Candelabrum desmidiaceum and Candelabrum clathrosphaeroides spp. nov., additions and key to Candelabrum. Mycol. Res. 102(4): 410-414.
  143. Nawawi, A. & Kuthubutheen, A. J. 1988. Additions to Condylospora (hyphomycetes) from Malaysia. Mycotaxon. 33: 329-338.
  144. Tzean, S. S. & Chen, J. L. 1989. Two new species of Dictyosporium from Taiwan. Mycol. Res. 92(4):497-502.
  145. Hughes, S. J. 1980. New Zealand Fungi 27. New species of Guedea, Hadrosporium, and Helminthosporium. New Zealand J. Bot. 18: 65-72.
  146. Castañeda-Ruíz, R. F. & Heredia, G. 2000. Two new dematiaceous hyphomycetes on Cyathea from Mexico. Cryptog. Mycol. 4: 221-228.
  147. Kirk, P. M. 1986. New or interesting microfungi XV. Miscellaneous Hyphomycetes from the British Isles. Trans. Brit. Mycol. Soc. 86(3): 409-422.
  148. Bagyanarayana, G., Rao, N. K. & Kunwar, I. K. 2009. Manoharachariella, a new dematiaceous hyphomycetous genus from India. Mycotaxon. 109:301-305.
  149. Holubová-Jechová, V. 1986. Lignicolous Hyphomycetes from Czechoslovakia. 8. Endophragmiella and Phragmocephala. Canad. J. Bot. 33:259-278.
  150. Iturriaga, T. & Korf, R. P. 1990. A monograph of the Discomycete genus Strossmayeria (Leotiaceae), with comments on its anamorph, Pseudospiropes (Dematiaceae). Mycotaxon. 36(2): 383-454.
  151. Castañeda-Ruíz, R. F. 1985. Deuteromycotina de Cuba. Hyphomycetes III. Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical "Alejandro de Humboldt" de la Academia de Ciencias de Cuba, Cuba, 42 pp.
  152. Sutton, B. C. 1989. Notes on Deuteromycetes. II. Sydowia. 41: 330-343.

Métadonnées additionnelles

Identifiants alternatifs 5dd971a0-a9f6-4ee0-b07f-9ad51e8f41c1
https://www.snib.mx/iptconabio/resource?r=SNIB-IE004